Ауторадиография. Меченых атомов метод Изотопы, используемые в радиоавтографии

Метод радиоавтографии

Радиоавтография, определение, история.

Метод радиоавтографии основан на введении в исследуемый объект соединения, "меченого" радиоактивным атомом и выявлении места его включения путем фотографической регистрации излучения. Основой получения изображения является воздействие ионизирующих частиц, образующихся при распаде радиоактивного атома, на ядерную фотоэмульсию, содержащую кристаллы галоидного серебра.

Открытие метода радиоавтографии напрямую связано с открытием явления радиоактивности. В 1867 году было опубликовано первое наблюдение о влиянии солей урана на галогениды серебра (Niepce de St.Victor). В 1896 году Генри Беккерель наблюдал засвечивание фотопластинки солями урана без предварительной экспозиции на свету. Этот эксперимент считается моментом открытия явления радиоактивности. Радиоавтографию применительно к биологическому материалу впервые использовали Лакассань и Латтье (Lacassagne, Lattes 1924) в 20-х годах прошлого века; гистологический блок от различных органов животных после введения им изотопов прижимали плоской стороной к рентгеновской пластинке и экспонировали. Заранее получали гистологический срез и подвергали стандартной процедуре окраски. Полученный автограф изучали отдельно от среза. Этот метод позволяет оценить интенсивность включения изотопа в биологический образец. В сороковых годах Леблон использовал радиоавтографию для демонстрации распределения изотопа иода в срезах щитовидной железы (Leblond C.P. 1943).

Первые попытки сочетать радиоавтографию с электронной микроскопией были сделаны в 50-е годы (Liquir-Milward, 1956). Электронно-микроскопическая радиоавтография представляет собой частный случай обычной радиоавтографии, при котором также подсчитываются зерна серебра и учитывается их распределение. Особеннось метода состоит в применении очень тонкого слоя эмульсии. В настоящее время достигнуто разрешение около 50 нм, что в 10-20 раз выше в сравнении со световой микроскопией.

В настоящее время метод радиоавтографии дополнен возможностью автоматической оценки количества зерен серебра с помощью видеоанализаторов. Часто для усиления сигнала метки (как правило это изотопы с высокими энергиями) применяются различные виды сцинтиляторов, нанесенные на пластины (усиливающий экран с фосфорным покрытием), или импрегнированные в эмульсию (PPO) – в таком случае излучение фотонов засвечивает обычную фотопластину или фотопленку.

Фотографический принцип получения изображения, фотоэмульсии

В радиографическом исследовании роль детектора ядерных распадов выполняет фотоэмульсия, в которой при прохождении ионизирующей частицы остается скрытое изображение, выявляемое затем в процессе проявки, аналогично обработке обычной фотопленки.

Фотоэмульсия представлет из себя взвесь микрокристаллов галоидного серебра в желатине. Микрокристаллы имеют дефекты в структуре, называемые центрами чувствительности. Согласно модели Гэрни-Мотта эти нарушения ионной решетки кристалла способны захватывать электроны, высвободившиеся при прохождении альфа- или бета-частицы в зоне проводимости кристалла, в результате чего ион превращается в атом. Образовавшееся скрытое изображение может быть выявлено с помощью процедуры, в результате которой активированные кристаллы галоидного серебра превращаются в зерна металлического серебра (этот процесс называется химической проявкой). В качестве проявителя может быть использован любой агент с достаточной восстанавливающей активностью (типично в фотографии и авторадиографии используются метол, амидол или гидрохинон). После проявления экспонированных кристаллов остальные микрокристаллы галоидного серебра удаляют из эмульсии при помощи фиксатора (обычно - гипосульфит). Ядерные фотоэмульсии характеризуется разрешающей способностью (зернистостью) и чувствительностью. Первая определяется размером микрокристаллов соли серебра и обратно пропорциональна последней. Фотоэмульсия характеризуется пониженной чувствительностью к видимому свету, но работа с ней, тем не менее, должна производится в темноте, чтобы исключить появление артефактов.

Эмульсия может наносится на препарат в виде готовой пленки с подложкой или погружением препарата в разогретую жидкую эмульсию – таким образом получается тонкий равномерный слой, который проявляется обычным способом. Перед нанесением эмульсии для световой микроскопии препарат обычно окрашивают требуемой гистологической окраской, но более бледно, чем обычно, чтобы сделать возможным подсчет зерен серебра на всех участках. Определенное время препарат экспонируют, затем проявляют.

Изотопы, используемые в радиоавтографии.

В радиоавтографии в зависимости от целей исследования и доступных материалов возможно применение различных изотопов. Изображение, создаваемое ионизирующей частицей на ядерной фотоэмульсии зависит от энергии частицы и типа ее взаимодействия с веществом.

Альфа-частицы, испускаемые одинаковыми радиоактивными ядрами обладают одинаковой энергией (E ) и одинаковой длиной пробега (R ) , связанными следующим соотношением:

R = kE 3/2

Где k – константа, характеризующая среду, в которой распространяются частицы. Величина пробега частиц в серде определяется ее плотность и элементарным составом. Соотношение Брегга-Климена позволяет по величине пробега альфа-частиц в воздухе (R 0) оценить пробег в веществе с атомной массой A и плотностью d :

R= 0,0003 (R 0 / d) A 1/2

Поскольку ионизирующая способность альфа-частиц очень высока, это облегчает фотографическую регистрацию распределения изотопа, а так же позволяет использовать для регистрации неэмульсионные материалы. След альфа-частиц, испускаемых одним источником, на автографах выглядит как пучок прямолинейных отрезков, обычно длиной 15-50 мкм, исходящих из одной точки, что позволяет точно локализовать участок включения радиоактивной метки. Однако, альфа-частицы испускаются изотопами с большими атомными номерами, что ограничивает возможность их применения в качестве биологической метки.

Треки альфа-частиц часто наблюдаются в гистологических радиовтографах как артефакт – результат собственного излучения изотопов, находящихся в предметном стекле.

Прохождение бета-частиц и моноэнергетических электронов через вещество сопровождается двумя основными типами взаимодействия. При взаимодействии с орбитальным электроном частица может передать ему энергию, достаточную для ионизации атома (удаления электрона с орбиты). В редких случаях эта энергия настолько велика, что можно наблюдать трек освобожденного электрона. Из-за равенства масс частицы и электрона происходит отклонение от первоначального движения. Взаимодествие второго типа, с атомными ядрами, приводит к возникновению тормозного рентгеновского излучения. Хотя последнее и не регистрируется эмульсией, акт взаимодейтсвия частицы с ядром может быть обнаружен по резкому излому траектории.

Многократное взаимодействие с орбитальными электронами приводит к искривлению траектории, которая обычно выглядит как извилистая линия, особенно в конечной части, когда скорость частицы падает, а ионизирующая способность возрастает. Длина траектории заметно превышает расстояние от начальной до конечной точки трека – пробег. По этой причине даже для моноэнергетических электронов характерно наличие спектра пробегов, ограниченного сверху R max, харакерным для данного излучения. Из-за более низких ионизационных потерь бета частицы регистрируются с большими сложностями, чем альфа-частицы. Они не образуют сплошных треков (кроме самого мягкого излучения трития – однако в этом случае мала вероятность прохождения более чемп через один кристалл эмульсии), плотность и число проявленных кристаллов варьируют в различных пределах. Пробег бета-частицы в другом элементе может быть оценен по формуле:

R = R A1 (Z/A) A1 / (Z/A)

В широком диапазоне значений Emax максимальный пробег связан с максимальной энергией соотношением:

R m = 412 E max 1.265 – 0,0954 ln Emax

Различие в пробегах, ионизационной способности и плотности проявленных эмульсионных кристаллов у частиц с различной энергией может быть использовано для дискриминации распределения элементов, эсли их изотопы существенно отличаются по E max, как в случае с тритием и 14 С. Дискриминацию распределения двух изотопов осуществляют с помощью нанесения на образец двух эмульсионных слоев, первый слой регистрирует преимущественно мягкое излучение, второй – жесткое. Согласно некоторым работам различные изотопы могут быть надежно выделены по размеру проявленных эмульсионных кристаллов - кристаллы, затронутые бета-частицей трития, обладающей большей ионизационной способностью, имеют большие размеры.

Электроны внутренней конверсии образуются при поглощении гамма кванта с очень низкой энергией излучения и удалении электрона с внутренней оболочки атома. Эти электроны подобны мягким бета-частицам, но в отличие от последних являются моноэнергетическими. Наличие электронов внутренней конверсии позволяет использовать такие изотопы как 125 I.

В настоящее время чаще всего используются изотопы, излучающие бета-частицы. Как правило для метки в гистологических исследованиях используется тритий. Первые автографы с использование трития были изготовлены еще в 50-е годы (Fitzgerald et al. 1951), однако широкое его применение началось после того, как в Брукхэвенской лаборатории был получен меченый тритием тимидин. Поскольку водород входит в состав всех органических веществ, то, используя тритий, можно получать самые разные соединения, несущие радиоактивную метку. Чем меньше энергия испускаемой частицы, тем короче трек, оставляемый ей при движении в фотоэмульсии и тем точнее можно локализовать расположение меченого атома. Длина пробега бета-частиц трития около 1-2 мкм, наиболее вероятная энергия 0,005 МэВ, а трек состоит в большинстве случаев из одного зерна серебра, что позволяет локализовать источник излучения не только в относительно крупных клеточных структурах, таких как ядро, но и в отдельных хромосомах.

Введение "меченых" метаболитов в организм позволяет проследить включение изотопа в клетки тканей животного, что дает возможность исследовать самые разные биохимические процессы в живом организме.

Получение абсолютных данных – концентрации меченого вещества в изучаемом объекте редко бывает целью радиоавтографического исследования, для этого необходимо знание ряда условий, определение которых затруднено. Поэтому количественные радиоавтографические исследования обычно проводят путем сравнения концентрации зерен серебра над исследуемым объектом и контролем, при этом контрольные данные удобно принимать за единицу, или 100%.

Характеристики некоторых изотопов, используемых

в радиоавтографии биологических объектов

Бета-частицы радиоактивного фосфора способны пролетать в ядерной эмульсии расстояния до нескольких миллиметров, трек состоит из десятков редко расположенных частиц серебра – так, радиоактивный фосфор может быть использовани только для изучения распределения изотопа в тканях, локализацию в отдельных клеточных структурах установить невозможно.

Радиоактивные сера и углерод могут быть использованы для локализации изотопа в отдельных клетках, при условии того, что они крупные или расположены на достаточном расстоянии друг от друга, что может быть достигнуто в мазках крови или клеточных суспензиях.

Разрешающая способность и погрешности метода, ошибки метода.

Геометрическая ошибка – в связи с тем, что испускаемая частица может быть направлена под любым углом к поверхности фотослоя. Следовательно, зерно серебра в фотослое может быть расположено не точно над радиоактивным атомом, а более или менее смещено в зависимости от направления движения частицы и длины пробега (энергии).

Фотоошибка возникает в связи с тем, что зерно серебра, состоящее из тысяч атомов металла намного больше, чем радиоактивный атом. Таким образом, о локализации меньшего объекта приходится судить исходя из положения большего.

При использовании трития, характеризующегося малой энергией (пробегом) испускаемых частиц и ядерных фотоэмульсий с низкой зернистостью разрешающая способность метода радиоавтографии лежит в пределах разрешающей способности оптических систем – 1 мкм. Таким образом, эти ошибки не имеют существенного влияния на получаемый результат.

Для достижения лучшего разрешения необходимо уменьшать толщину среза, слоя эмульсии и расстояние между ними. Препарат следует немного недоэкспонировать.

Эффект автоабсорбции: Число зерен серебра зависит от степени поглощения излучения клеточными структурами, благодаря малому пробегу и малой энергии бета-частиц, их абсорбция в тканях достаточно велика, что может приводить к потере метки, поэтому важное значение приобретает вопрос о толщине срезов. Показано, что число зерен серебра пропорционально радиоактивности ткани только при толщине среза не более 5 мк.

Относительное число бета-частиц, прошедших сквозь слой поглотителя толщиной х может быть оценено по закону Бэра –

N x /N 0 = e - m x

Где m - коэффициент поглощения (величина, обратная толщине слоя, при прохождении которого число частиц уменьшается в e раз. Величину коэффициента поглощения можно приближенно оценить по величине Rm (максимальный пробег), известной для всех изотопов, с помощью соотношения m Rm = 10, справедливого для не слишком жестких излучений.

Если в слое единичной толщины в единицу времени возникает n частиц, движущихся к поверхности, то в образце толщиной х поверхности достигнет N частиц:

Фон и артефакты: Ошибку в измерения могут вносить так же механические воздействия – царапины, трещины эмульсии, ведущие к образованию скрытого изображения и фоновое излучение, которое необходимо учитывать при обработке радиоавтографов. Фон учитывают подсчетом числа зерен серебра на пустом участке препарата. Ошибки так же вносятся в результате гистологической обработки срезов – проводки по спиртам (дегидратации), заключения в парафин, окраски. Эти процедуры могут влиять на размеры и соотношения клеточных структур.

Радиационный эффект меченых метаболитов: Благодаря малой энергии излучения тритий вызывает в клетке значительную ионизацию, намного превышающую радиационный эффект бета-частиц углерода. Вследствие этого при продолжительном действии меченого соединения например 3 H-тимидина происходит разрушение и гибель клеток, приводящие к остановке роста тканей. В первую очередь нарушается сперматогенез. Имеются данные о мутагенном и канцерогенном действии меченых метаболитов. Наблюдаемые цитологические изменения заключаются в нарушении прохождения клетками митотического цикла, изменении плоидности клеток и появлении хромосомных аберраций. Но, по-видимому, повреждающее действие изотопа на клетки мождет заметным образом сказываться на результатах исследования лишь в условиях длительного эксперимента.

Количественная оценка радиоактивности

Как правило, в эксперименте определяют не абсолютное, а относительное количество включившегося изотопа. Степень включения метки можно оценить двумя способами – денситометрически – что более применимо к макроавтографам и прямым подсчетом зерен серебра над объектами. Эта трудоемкая процедура в настоящее время может быть выполнена с помощью компьютера. Цифровой снимок гистологического препарата обрабатывается специальным програмным обеспечением, с целью автоматически выделить на нем клетки и клеточные структуры и подсчитать косличество зерен серебра. Если встает вопрос о количественной оценке – необходимо привлекать понятие эффективности. Чаще всего под эффективностью понимают число зерен серебра, образующихся при регистрации одного радиоактивного распада. На эффективность метода влияют многие факторы, в первую очередь толщина объекта и эмульсии.

В исследованиях с помощью сцинтиляционного счетчика была найдена высокая корреляция между средним числом распадов в минуту и количсетвом зерен серебра. По данным Ханта (Hunt, Foote, 1967) образование одного зерна в применявшейся в эксперименте эмульсии соответствует 5.8 радиоактивных распадов, т.е эффективность метода составляет 17.8%.

Для количественной оценки трития в макроскопических препаратах могут быть использованы образцы со стандартной активностью, которые монтируются на том же автографе.

Точна оценка радиоактивности сравниваемых биологических объектов очень сложна.

Классический пример радиоавтографического исследования – это работа по изучению накопления 32 P в ДНК клеток корня конского боба (Howard, Pelc, 1953). В этом эксперименте было впервые показано деление митотического цикла на четыре периода (митоз - M, G 1 - пресинтетический период, S – синтез ДНК, премитотический период G 2), что период синтеза ДНК занимает ограниченную часть интерфазы, будучи отделен во времени от начала и окончания митоза. Данные Говард и Пелка позднее нашли подтверждение в более точных экспериментах с применением спецефического предшественника ДНК – 3 H-тимидина.

Методы оценки синтеза белка. Наиболее распространенными предшественниками для оценки общего белкового синтеза в радиоавтографических исследованиях служат 3 H-лейцин, 3 H-метионин, 3 H-фенилаланин. Например, с использованием лейциновой метки изучался синтез общего белка в головном мозге крыс первых недель постнатального развития (Pavlik, Jakoubek, 1976). Для изучения синтеза гистонов и их влияния на регуляцию транскрипции используют основные аминокислоты 3 H-лизин и 3 H-аргинин, для изучения синтеза кислых белков - 3 H-триптофан. Плотность включения аминокислотной метки соответствует интенсивности синтеза белка, а следовательно отражает функциональную активность нейрона. Радиоавтографический метод позволяет сравнивать особенности синтеза белка в различных тканях животных при экспериментальном воздействии, позволяет проследить динамику изменений на уровне отдельных типов клеток и клеточных структур (ядро, тело клетки, отростки нейрона – аксональный транспорт).

В настоящее время радиоавтографический метод часто используется для изучения мозга в работах с использованием радиолигандов к определенным рецепторам. Таким образом построены карты распределения различных рецепторов в структурах мозга животных и человека.

Радиоавтографический метод также используется для визуализации гелей в биохимии и в сочетании с иммунологическими методами (РИА).

Использованная литература:

1.Епифанова О.И. и др. Радиоавтография М., «Высш.школа», 1977

2.Саркисов Д.С. Перов Ю.Л. Микроскопическая техника М.: «Медицина», 1996

3.Rogers A.W. Practical autoradiography, Amersham UK, 1982

4.Бокштейн С.З. Гинзбург С.С. и др. Электронно-микроскопическая авторадиография в металловедении М., «Металлургия»

АВТОРАДИОГРАФИЯ (ауторадиография ) - способ регистрации альфа- и бета-излучений, основанный на фотохимическом действии ионизирующих излучений. Для обнаружения радиоактивных изотопов фотографическая эмульсия приводится в соприкосновение с исследуемым материалом, в результате чего альфа- и бета-частицы вызывают почернение фотоэмульсии в виде линий (треков) по ходу пробега частицы. Альфа-частицы дают прямые широкие треки, бета-частицы - узкие неравномерные зигзагообразные полоски.

Авторадиографию в биологии впервые применил Е. С. Лондон (1904) для обнаружения радия в тканях животных. В дальнейшем метод использовали для изучения накопления, распределения и выведения малых количеств радиоактивных изотопов в разных органах и тканях организма.

В практике принято различать макроавторадиографию и микроавторадиографию. С помощью макроавторадиографии изучают распределение радиоактивных изотопов во всем организме или в отдельных его органах и тканях (напр., P 32 - в злокачественных новообразованиях).

Авторадиограммы получают со слизистой оболочки желудка, пищевода пли прямой кишки путем введения в эти органы тонкостенных резиновых баллонов, покрытых эмульсией, чувствительной к действию бета-частиц (см. Бета-диагностика). Наличие или отсутствие на авторадиограммах признаков локальной адсорбции изотопа P 32 дает цепные дополнительные сведения для дифференцирования воспалительных изменений и злокачественных опухолей пищевода, желудка и прямой кишки.

Более широкое применение получила микроавторадиография, позволяющая при обычной или электронной микроскопии (см.) выявить локализацию радиоактивных изотопов в гистологических или цитологических препаратах. Анализ распределения радиоактивных изотопов в гистологическом срезе ткани производится на основании измерения оптической плотности почернения фотографического слоя (контрастная Авторадиография) или путем подсчета под микроскопом числа следов (треков) альфа- и бета-частиц (следовая Авторадиография).

Гистоавторадиография , являющаяся одним из видов микроавторадиографии, позволяет визуально оценивать различную степень интенсивности биохимических процессов в клетках. Она дает возможность наблюдать динамику процессов, происходящих в ядре и цитоплазме, дифференцированно анализировать каждый из этих процессов, их взаимоотношения, стадийность, различную степень выраженности в разных отделах клетки.

При гистоавторадиографии в организм вводят естественные компоненты биохимических процессов, предварительно пометив их радиоактивными изотопами, что дает возможность наблюдать за течением этих процессов в ядре, мембранах и различных цитоплазматических структурах клетки путем фотографической регистрации излучения радиоактивных изотопов. Особенность этой методики состоит в совмещении возможностей качественного анализа, количественного учета и изучения пространственного распределения в ткани радиоактивных веществ.

Принцип химической реакции при гистоавторадиографии сводится к восстановлению бромистого серебра фоточувствительной эмульсии в зерна металлического серебра под воздействием ионизирующего излучения. Эти зерна образуются по ходу движения элементарных частиц в эмульсии и становятся заметными после проявления эмульсии, покрывающей срез пли мазок. Затем срез или мазок красят обычным способом (применяя любую гистологическую окраску или гистохимическую реакцию) вместе с проявленной пленкой или эмульсией. Мягкое бета-излучение при соприкосновении среза с мелкозернистой ядерной эмульсией дает возможность изготовления радиоавтографа.

При помощи гистоавторадиографии можно изучать различные обменные процессы в клетках и их структурах в физиологических и патологических условиях, исследовать обмен нуклеопротеидов, синтез белка, гормонов и ферментов, наблюдать формирование клеточных и внутриклеточных структур, изучать закономерности внутриклеточных биологических ритмов, регенерацию, воспаление, опухолевый рост. Большое значение гистоавторадиография имеет для изучения динамики митотического цикла, его особенностей в клетках разных органов при различных условиях.

Необходимым условием успешного использования этой методики является ясное представление об особенностях изучаемых явлений и правильный подбор соответствующих радиоактивных изотопов. Так, например, Н 3 -тимидин, участвуя в синтезе ДНК, являясь ее предшественником, позволяет радиоавтографически проследить ДНК-синтетические процессы.

После введения Н 3 -тимидина метку воспринимают только клетки, синтезирующие ДНК. Процент меченых клеток в каждом типе клеток сразу после введения радиоактивного изотопа соответствует отношению времени синтеза ДНК (S) к генерационному времени (длине всего клеточного цикла -tg) данного клеточного типа. Чем выше процент метки в популяции, тем большую часть генерационного времени составляет синтетический период. Ряд возможностей открывает анализ числа гранул радиоактивного вещества в клетке, поскольку количество гранул соответствует количеству синтезированной ДНК.

Гистоавторадиография и электронная Авторадиография, дающие возможность коррелировать метаболическую активность с морфологией отдельных клеток и изучать субклеточную локализацию инкорпорированного радиоактивного изотопа, в сочетании с современными способами математического анализа представляют собой перспективные методы исследования.

Микроавторадиография в вирусологии нашла широкое применение для изучения начальных этапов взаимодействия вирусов и клеток (адсорбция, проникновение вирусов В клетки и т. д.) и процессов синтеза вирусных компонентов. В первом случае используется меченый вирус, который получают главным образом в результате инфицирования вирусом культуры ткани в присутствии меченых предшественников - нуклеотидов или аминокислот. В этих условиях вновь образующиеся дочерние вирионы содержат в своем составе радиоактивный изотоп. Используя микроавторадиографию, можно проследить судьбу этого изотопа, а отсюда и вируса в процессе его взаимодействия с клеткой. Применение этой методики для определения синтеза вирусных компонентов - нуклеиновых кислот и белков - заключается в том, что в различные сроки после инфицирования культуры ткани вирусами в культуральную среду вносят меченые предшественники указанных компонентов (наиболее часто употребляют: Н 3 -тимидин для изучения синтеза ДНК, Н 3 -уридин - для РНК и Н 3 -лейцин или Н 3 -валин - для белка).

После определенного периода инкубации клетки культуры тщательно отмывают от не внедрившихся в них молекул предшественника, фиксируют, наносят топкий слой ядерной эмульсии (типа Р, М или П), выдерживают в темноте (время экспозиции колеблется В зависимости от дозы и типа применяемого изотопа) и затем проявляют.

При использовании микроавторадиографии для определения синтеза вирусных компонентов можно получить сведения не только о локализации изучаемого процесса (при сочетании с гистологическим окрашиванием клеток), но и о его интенсивности (количественная Авторадиография), подсчитывая суммарную площадь клеток и их компонентов и число проявленных зерен серебра в определенном количестве клеток. Существует прямая зависимость между количеством зерен и интенсивностью процесса синтеза.

При Авторадиографии в вирусологии используют органические соединения, содержащие следующие радиоактивные изотопы: C 14 , P 32 , S 35 и H 3 . Наиболее широкое применение находят соединения, содержащие тритий. Используя предшественники, в состав которых входят изотопы, обладающие различными энергиями распада, можно одновременно метить нуклеиновые кислоты (напр., C 14) и белки (напр., Н 3) вирионов. В этом случае названные компоненты можно различить по разной величине зерен (более крупные характерны для С 14 , мелкие для H 3). Одновременное применение метода флуоресцирующих антител позволяет определить в одних и тех же препаратах появление специфических вирусных белков.

Библиография: Абелев Г. И. и Бакиров Р. Д. Иммуноавторадиография, в кн.: Иммунохимический анализ, под ред. Л. А. Зильбера, с. 271, М., 1968, библиогр.; Бережнов И. П. К методике прижизненной авторадиографии при раке желудка, в кн.: Вопр. клин, и эксперим. онкол., под ред. А. И. Саенко, т. 3, с. 89, Фрунзе, 1967: Богомолов К. С. и др Авторадиографическая методика в электронномикроскопических исследованиях, Лаборат. дело, № 6, с. 359, 1971; Бойд Д. А. Авторадиография в биологии и медицине, пер. с англ.. М., 1957, библиогр.; Грачева Н. Д. и др. Пособие по гистоавторадиографии, Л., 1960, библиогр.; Гущин Б. В. и Клименко С. М. Элсктронномикроскопическая авторадиография, Вопр. вирусол., № 4, с. 387, 1965, библиогр.; Иванов И. И. и др. Радиоактивные изотопы в медицине и биологии, с. 136, М., 1955; Крымский Л. Д. и Боцманов К. В. Авторадиография как метод современной функциональной морфологии, Арх. патол., т. 33, № 1, с. 74, 1971, библиогр.; Петерсон О. П. и Березина О. Н. Методы применения изотопов в вирусологических исследованиях, Руководство но лаборат. диагностике вирусных и риккетсиозных болезней, под ред. П. Ф. Здродовского и М. и. Соколова, с. 178, М., 1965; Роджерс Э. Авторадиография, пер. с англ., М., 1972, библиогр.; Autoradiographie, hrsg. v. Н. Zimmermann u. J. Fautrez, Jena, 1968, Bibliogr.; Caro L. Progres in high-resolution autoradiography, Progr Biophys. molec. Biol., v. 16, p. 173, 196C bibliogr.; Kemp C. L. Electron microscope autoradiographic, studies of HSa metabolism in Trillium erectum microspores, Chromosoma (Berl.), Bd 19, S. 137. 1966, Bibliogr.; SalpeterM. M. a_ Вaсhinann L. Assessment of technical steps in electron microscopic autoradiography, в кн.: The use radioautography in invest, protein synthesis, ed. by C. P. Leblond а. К. B. Warren, v. 4, p. °3 N. Y.- L., 1965, bibliogr.

А, И. Ишмухаметов; Л. Д. Крымский (гист.), И. Г. Баландин (вир.).

Авторадиогра"фия, ауторадиография, радиоавтография, метод изучения распределения радиоактивных веществ в исследуемом объекте наложением на объект чувствительной к радиоактивным излучениям фотоэмульсии. Содержащиеся в объекте радиоактивные вещества как бы сами себя фотографируют (отсюда и название). Методом А. широко пользуются в физике и технике, в биологии и медицине - всюду, где применяются изотопные индикаторы.

После проявления и фиксации фотоэмульсии на ней получается изображение, отображающее исследуемое распределение. Существует несколько способов прикладывания фотоэмульсии к объекту. Фотопластинку можно прямо наложить на отшлифованную поверхность образца или же можно наносить на образец тёплую жидкую эмульсию, которая при застывании образует плотно прилегающий к образцу слой и после экспозиции и фотообработки исследуется. Распределение радиоактивных веществ изучают, сравнивая плотность почернения фотоплёнки от исследуемого и эталонного образца (т.н. макрорадиография). Второй метод состоит в подсчёте следов, образуемых ионизующими частицами в фотоэмульсии, с помощью оптического или электронного микроскопа (микрорадиография). Этот метод значительно чувствительнее первого. Для получения макроавтографов применяются диапозитивные и рентгеновские эмульсии, для микроавтографов - специальные мелкозернистые эмульсии.

Фотографическое изображение распределения радиоактивных веществ в исследуемом объекте, полученное методом А., называется авторадиограммой, или радиоавтографом.

На рис. 1, 2 и 3 приведены примеры авторадиограмм. Методом А. можно обнаруживать присутствие радиоактивных элементов в различных рудах, распределение природных радиоактивных элементов в тканях растительных и животных организмов и т. д.

Введение в организм соединений, меченных радиоизотопами, и дальнейшее исследование тканей и клеток методом А. позволяет получить точные данные о том, в каких именно клетках или клеточных структурах происходят те или иные процессы, локализуются те или иные вещества, установить временные параметры ряда процессов. Так, например, применение радиоактивного фосфора и А. дали возможность обнаружить присутствие интенсивного обмена веществ в растущей кости; применение радиоиода и А. позволили уточнить закономерности деятельности щитовидной железы; введение меченых соединений - предшественников белка и нуклеиновых кислот, и А. помогли уяснить роль в обмене этих жизненно важных соединений определённых клеточных структур. Метод А. позволяет определить не только локализацию радиоизотопа в биологическом объекте, но и его количество, поскольку число восстановленных зёрен серебра эмульсии пропорционально количеству воздействующих на неё частиц. Количественный анализ макроавтографов проводят обычными приёмами фотометрии, а микроавтографов - подсчётом под микроскопом зёрен серебра или следов-треков, возникших в эмульсии под действием ионизующих частиц. А. начинают успешно сочетать с электронной микроскопией. См. также Радиография.

Лит.: Бойд Д. А. Авторадиография в биологии и медицине, пер. с англ., М., 1957; Жинкин Л. Н., Применение радиоактивных изотопов в гистологии, в кн.: Радиоактивные индикаторы в гистологии, Л., 1959, с. 5-33; Perry R., Quantitative autoradiography, «Methods in Cell Physiology», 1964, v. I, ch. 15, p. 305-26.

Н. Г. Хрущов.

Рис. 2. Авторадиограмма (отпечаток), показывающая распределение фосфора (32 Р) в листьях помидора. Растение помещалось предварительно в раствор, содержащий радиоактивный фосфор. Светлые участки соответствуют повышенным концентрациям радиоактивного изотопа; можно видеть, что фосфор сконцентрировался у стебля и в сосудистых частях листьев.

Рис. 1. Микрорадиограмма образца никеля. Исследуется диффузия олова, меченного радиоактивным изотопом 113 Sn, в никеле. Распределение радиоактивного олова показывает, что диффузия в основном происходит по границам зёрен никеля.

Рис. 3. Включение в ядра соединительнотканых клеток меченного тритием тимидина, идущего на построение нуклеиновых кислот. Увеличено в 600 раз.

Авторадиогр а фия, ауторадиография, радиоавтография , метод изучения распределения радиоактивных веществ в исследуемом объекте наложением на объект чувствительной к радиоактивным излучениям фотоэмульсии. Содержащиеся в объекте радиоактивные вещества как бы сами себя фотографируют (отсюда и название). Методом авторадиографии широко пользуются в физике и технике, в биологии и медицине - всюду, где применяются изотопные индикаторы.

После проявления и фиксации фотоэмульсии на ней получается изображение, отображающее исследуемое распределение. Существует несколько способов прикладывания фотоэмульсии к объекту. Фотопластинку можно прямо наложить на отшлифованную поверхность образца или же можно наносить на образец тёплую жидкую эмульсию, которая при застывании образует плотно прилегающий к образцу слой и после экспозиции и фотообработки исследуется. Распределение радиоактивных веществ изучают, сравнивая плотность почернения фотоплёнки от исследуемого и эталонного образца (т.н. макрорадиография).

Второй метод состоит в подсчёте следов, образуемых ионизующими частицами в фотоэмульсии, с помощью оптического или электронного микроскопа (микрорадиография) . Этот метод значительно чувствительнее первого. Для получения макроавтографов применяются диапозитивные и рентгеновские эмульсии, для микроавтографов - специальные мелкозернистые эмульсии.

Фотографическое изображение распределения радиоактивных веществ в исследуемом объекте, полученное методом авторадиографии, называется авторадиограммой, или радиоавтографом .

Введение в организм соединений, меченных радиоизотопами, и дальнейшее исследование тканей и клеток методом авторадиографии позволяет:

• получить точные данные о том, в каких именно клетках или клеточных структурах происходят те или иные процессы,
• локализуются те или иные вещества,
• установить временные параметры ряда процессов.

Так, например, применение радиоактивного фосфора и авторадиографии дали возможность обнаружить присутствие интенсивного обмена веществ в растущей кости; применение радиоиода и авторадиографии позволили уточнить закономерности деятельности щитовидной железы; введение меченых соединений - предшественников белка и нуклеиновых кислот, и авторадиография помогли уяснить роль в обмене этих жизненно важных соединений определённых клеточных структур. Метод авторадиографии позволяет определить не только локализацию радиоизотопа в биологическом объекте, но и его количество, поскольку число восстановленных зёрен серебра эмульсии пропорционально количеству воздействующих на неё частиц. Количественный анализ макроавтографов проводят обычными приёмами фотометрии, а микроавтографов - подсчётом под микроскопом зёрен серебра или следов-треков, возникших в эмульсии под действием ионизующих частиц. Авторадиографию начинают успешно сочетать с электронной микроскопией

Меченые атомы широко применяются в цитологии для изучения разнообразных химических процессов, протекающих в клетке, например: для изучения синтеза белков и нуклеиновых кислот, проницаемости клеточной оболочки, локализации веществ в клетке и т. д.

Для этих целей применяются соединения, в которые введена радиоактивная метка.

В молекуле меченого вещества, например аминокислоты или углевода, один из атомов замещен атомом того же вещества, но обладающим радиоактивностью, т. е. радиоактивным изотопом. Известно, что изотопы одного и того же элемента не отличаются друг от друга по своим химическим свойствам, и, попав в организм животного или растения, они ведут себя во всех процессах так же, как и обычные вещества. Однако благодаря тому, что эти изотопы обладают радиоактивным излучением, их можно легко обнаружить, применяя фотографический метод.

В цитологических исследованиях наиболее широкое распространение получили искусственные радиоактивные изотопы, обладающие мягким излучением, в процессе распада которых образуются электроны с небольшой энергией. К числу таких изотопов относятся: изотоп водорода -- тритий 3Н, изотоп углерода 14С, фосфора 32Р, серы 35S, йода 1311 и других элементов, входящих в состав органических соединений.

Меченые соединения вводятся непосредственно в организм животного или растения, в изолированные из организма клетки, находящиеся в культуре тканей, в клетки простейших и бактерий. Пути введения их в организм различны: многоклеточным животным они вводятся путем инъекции или с пищей, в случае культур клеток и тканей, простейших и бактерии, а также очень мелких многоклеточных организмов меченые соединения вводятся в культуральную среду.

Введенные в организм радиоактивные изотопы активно включаются в обмен веществ. Доза вводимого в организм меченого соединения устанавливается опытным путем и не должна быть слишком большой, чтобы не нарушить нормального обмена веществ вследствие значительного радиоактивного излучения.

Через различные промежутки времени после введения меченых соединений фиксируются кусочки тканей и органов, клетки простейших и бактерий. Наилучшие результаты дает фиксация смесью Карнуа или спиртово-уксусной смесью (3:1). Из фиксированного материала приготовляются обычные парафиновые срезы, на поверхность которых (после удаления парафина) наносится тонкий слой чувствительной фотографической эмульсии. Эта так называемая ядерная эмульсия характеризуется очень мелким размером зерен (0,2-0,3 ж/с), их однородностью и значительно большим насыщением желатины AgBr, чем обычная фотографическая эмульсия.

Препараты с нанесенной на них фотоэмульсией экспонируются в темноте, при относительно низкой температуре (около 4°С), а затем проявляются и закрепляются так же, как при получении обычных фотографий. За время экспонирования препаратов излучение радиоактивных изотопов, включившихся в те или иные структуры клетки, оставляет след от пробега р-частиц в слое фотоэмульсии.

В процессе проявления зерна AgBr, оказавшиеся в местах пробега бетта-частиц, восстанавливаются проявителем до металлического серебра. Последние обладают черным цветом и обнаруживаются после проявления препаратов в виде зерен, находящихся в слое фотоэмульсии над теми клетками и их структурами, в которые оказался включенным радиоактивный изотоп. Такие препараты носят название радиоавтографов.

После процессов проявления и закрепления радиоавтографы тщательно промываются в воде, а затем окрашиваются одним из красителей, выявляющих то вещество в клетке, в которое должен включиться радиоактивный изотоп. Только некоторые виды окраски, например реакция Фельгена, производятся до нанесения эмульсии на радиоавтографы, так как гидролиз в кислоте и при высокой температуре обязательно повредит слой эмульсии. Готовые радиоавтографы заключаются в канадский бальзам и изучаются под микроскопом.

Включение радиоактивных изотопов осуществляется лишь в те участки клеток и их структуры, где происходят активные процессы, например процессы синтеза белков, углеводов, нуклеиновых кислот.

Для исследования синтеза белков используются разнообразные меченые аминокислоты. О синтезе нуклеиновых кислот можно судить по включению в их молекулы меченых нуклеозидов: тимидина, цитидина, уридина. Тимидин, меченный по тритию, т.е. 3Н-тимидин включается исключительно в молекулы ДНК, и с помощью именно этого радиоактивного предшественника в последние годы было выяснено много важных закономерностей синтеза ДНК, удалось проследить редупликацию хромосом. 3Н-цитидин и 3Н-уридин (или эти же соединения, меченные по углероду) включаются как в молекулы ДНК, так и в молекулы РНК. О синтезе полисахаридов в клетке можно судить по включению в них меченых глюкозы и Na2so4.

В последние годы разработан метод получения радиоавтографов для исследования их с помощью электронного микроскопа (электронная авторадиография), что дает возможность изучать биохимические процессы в ультраструктурах клетки, т. е. получать точные данные о локализации химических веществ и их превращений в клетках разных органоидов.

К числу количественных методов относятся прежде всего многочисленные биохимические методы, с помощью которых можно определить количество содержащихся в клетке неорганических и органических веществ.

Ценность этих методов, широко используемых в цитологии, состоит в том, что они позволяют получить данные об изменениях в количестве разнообразных веществ в разные периоды жизнедеятельности клетки, в разные периоды ее развития, при воздействии факторов внешней среды, при патологических процессах и т. д.

Количественные методы дают также возможность получить цифровые данные о веществах, потребляемых и выделяемых клеткой в процессе ее жизнедеятельности. Так, используя специальную аппаратуру (респирометры Варбурга, Крога и др.). можно очень точно учесть количество потребляемого тканями или отдельными клетками кислорода, а также те изменения интенсивности, процессов дыхания, которые происходят при разном температурном режиме и других условиях.

Один из важных количественных методов, дающих возможность определить сухой вес клетки, основан на применении интерференционного микроскопа. Сущность этого метода заключается в том, что в интерференционном микроскопе свет, прошедший через объект, испытывает сдвиг фазы по сравнению с «контрольным лучом», не прошедшим через объект. Величина фазового сдвига выражается в изменении яркости и зависит от плотности объекта, а плотность, в свою очередь, зависит от количества сухого вещества, содержащегося в данном объекте. Сухой вес клеток или их отдельных структур выражается в граммах, и для вычисления его нужно измерить размер клетки (или отдельной её структуры), а также величину фазового сдвига.

Метод определения сухого веса с помощью интерференционного микроскопа применим не только для фиксированных, но и для живых клеток.

Еще один важный и широко используемый метод количественного анализа химического состава клетки -- это цитофотометрия. Основу метода цитофотометрии составляет определение количества химических веществ по поглощению ими ультрафиолетового, видимого или инфракрасного света определенной длины волны.

Количественный анализ можно проводить как на основе собственных спектров поглощения химических веществ (т. е. на неокрашенных препаратах), так и на основе спектров поглощения красителя, которым окрашены структуры клетки. Примером может служить определение количества ДНК на препаратах, окрашенных по Фельгену, и количества РНК после окраски пиронином.

6. Цитофотометрия .

Поглощение света разнообразными клеточными структурами зависит от концентрации в них тех или иных химических веществ, и эта зависимость подчинена закону Ламберта-Бера: интенсивность поглощения лучей пропорциональна концентрации вещества при одной и той же толщине объекта. Различия в интенсивности поглощения света химическими веществами, локализованными в разнообразных клеточных структурах, выражаются количественными показателями, которыми часто служат относительные единицы, микрограммы и другие единицы измерения.

Приборы, служащие для целей спектрального анализа химического состава клеток, носят название цитофотометров. Цитофотометр включает источник света, фильтр, микроскоп и фотометр с фотоумножителем. На фотоумножитель проецируется изображение клетки.

При помощи цитофотометра определяется интенсивность прохождения света через клетку или же величина, обратная ей, т. е. оптическая плотность. Полученные величины сравниваются с такими же величинами, известными для других клеток, или же со стандартными образцами, Цитофотометры различных систем позволяют определять количество вещества до 10-12-14 г, т.е. характеризуются большой точностью измерений.

Метод цитофотометрии получил особенно широкое распространение в последние годы. Большое значение имеет то обстоятельство, что его можно сочетать с другими методами исследования, например с ультрафиолетовой микроскопией.